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Cellule tumorale circulante

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Les cellules tumorales circulantes dans le processus métastatique

Les cellules tumorales circulantes (CTC) sont des cellules qui se déplacent avec le sang une fois passées dans le système vasculaire depuis une tumeur en développement, cellules susceptibles de générer de nouvelles tumeurs, appelées métastases, dans des organes vitaux éloignés, phénomène responsable de la grande majorité des décès liés au cancer[1]. Les métastases cancéreuses sont un processus complexe en plusieurs étapes impliquant la sortie de cellules cancéreuses du site primaire, l'intravasation dans la circulation, la survie dans la circulation, l'extravasation de la circulation, ainsi que l'attachement et la colonisation du site métastatique. Les cellules tumorales circulantes ont été décrites pour la première fois en 1869 comme « certaines cellules » dans le sang d’un patient atteint d’un cancer métastatique avec une apparence similaire aux cellules tumorales des tumeurs primaires[2]. Les cellules tumorales circulantes sont le substrat des métastases. Bien que les cellules tumorales circulantes proviennent de la tumeur primaire, elles sont distinctes des cellules tumorales primaires[3], avec des propriétés de transition du microenvironnement tumoral qui les aident à se libérer de la tumeur primaire et facilitent l'intravasation dans la circulation sanguine, la dissémination en grappes de cellules tumorales circulantes pour augmenter le potentiel métastatique et présentent des caractéristiques de souche. qui améliorent leur capacité à initier des métastases. Cependant, la plupart des cellules tumorales circulantes périssent dans la circulation et seul un nombre limité de cellules tumorales circulantes survit et infiltre des organes distants. Les interactions entre les cellules tumorales circulantes et l'environnement sanguin, notamment la manière dont les cellules tumorales circulantes échappent à la surveillance immunitaire dans le sang, ont été largement impliquées dans les mécanismes métastatiques des cellules tumorales circulantes.

Il a fallu plus d’un siècle aux chercheurs pour reconnaître le rôle essentiel des cellules tumorales circulantes dans les métastases du cancer, en raison des défis techniques uniques requis pour isoler ces très rares cellules tumorales circulantes du pool massif de cellules sanguines en circulation[4]. Cependant, au cours des deux dernières décennies, les technologies émergentes pour l'isolement des cellules tumorales circulantes ont permis la recherche sur la biologie des cellules tumorales circulantes et ont facilité les applications cliniques des cellules tumorales circulantes dans le dépistage du cancer, la surveillance de la réponse au traitement et l'évaluation du pronostic.

Introduction

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Cellules tumorales circulantes d'un cancer du sein triple négatif par immunofluorescence par anticorps dirigé contre le récepteur du facteur de croissance épidermique. (rouge), la cytokératine (vert) et un colorant nucléaire (bleu)

Les cellules tumorales circulantes sont les cellules excrétées par les tumeurs dans la circulation sanguine. Après leur libération par les tumeurs, la plupart des cellules tumorales circulantes meurent dans la circulation (en environ 1 à 2,5 heures) en raison de forces mécaniques ou d'une attaque du système immunitaire[5]. Cependant, une petite fraction des cellules tumorales circulantes survivent et provoquent des maladies métastatiques à distance.

La technologie permet désormais la détection des cellules tumorales circulantes et leur interrogation aux niveaux moléculaire et fonctionnelles[6]. Les méthodes émergentes d’enrichissement, d’isolement et d’analyse cellulaire ont permis une meilleure compréhension de la biologie du cancer tumoral[6]. Le profilage moléculaire des cellules à l'aide du séquençage de nouvelle génération permet une analyse complète des altérations génomiques des cellules tumorales circulantes[7]. De plus, les caractéristiques phénotypiques et fonctionnelles des cellules peuvent fournir des informations sur les types de traitements que les patients devraient recevoir, et le dénombrement et la caractérisation des cellules tumorales circulantes peuvent également être importants pour déterminer le pronostic[8].

Le patient moyen atteint d’un cancer métastatique présente entre 5 et 50 cellules tumorales circulantes pour environ 7,5 ml de sang[9]. Par conséquent, les cellules tumorales circulantes apparaissent à des niveaux extrêmement faibles dans la circulation et sont masqués par des milliards de cellules du sang périphérique. Ce petit nombre limite l’utilité des cellules tumorales circulantes. Néanmoins, les cellules tumorales circulantes fournissent des informations fiables, et leur dénombrement revêt également une importance clinique. En effet, de nombreuses études ont rapporté que la détection des cellules tumorales circulantes sous forme de « biopsie liquide » peut être utilisée comme marqueur pour prédire la rechute, la progression et la survie du cancer[10],[11].

Les cellules tumorales circulantes détiennent des clés pour comprendre les métastases[10]. Des nombres élevés de cellules tumorales circulantes sont en corrélation avec une charge tumorale élevée, une maladie agressive et un délai de rechute plus court. Les cellules tumorales circulantes démontrent également un potentiel important dans la gestion thérapeutique, depuis la simple énumération des cellules tumorales circulantes pour l’évaluation de l’efficacité du traitement jusqu’à l’analyse moléculaire pour le choix des thérapies ciblées, et la culture des cellules tumorales circulantes éclaire les mécanismes de résistance[12]. De plus, en exploitant des plateformes moléculaires ultrasensibles, les cellules tumorales circulantes pourraient augmenter considérablement la capacité de diagnostiquer un cancer à un stade précoce. Enfin, la caractérisation moléculaire complète des cellules tumorales circulantes à l’aide de technologies avancées amplifie notre compréhension de la biologie du cancer[12].

Comparés à d'autres formes de biopsie liquide, telles que l'ADN/ARN tumoral circulant et les vésicules extracellulaires dérivées de cellules tumorales vivantes, les cellules tumorales circulantes sont des cellules entières possédant des informations morphologiques uniques et présentent des avantages distincts pour évaluer la génomique, la transcriptomique et la signalisation protéomique. . Dans l'ensemble, l'enrichissement des cellules tumorales circulantes du sang périphérique en tant que substitut non invasif à la biopsie tissulaire conventionnelle permet d'interroger en série et en temps réel l'évolution dynamique des néoplasmes, est prometteur pour faire progresser la médecine anticancéreuse de précision et permet la recherche fondamentale sur la biologie des tumeurs malignes[11].

Caractérisation moléculaires des cellules tumorales circulantes

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Marqueurs moléculaires

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La molécule d’adhésion des cellules épithéliales

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Plusieurs marqueurs moléculaires sont utilisés pour détecter les cellules tumorales circulantes dans divers cancers. La plupart des cancers étant d’origine épithéliale, le marqueur le plus couramment utilisé pour les cellules tumorales circulantes est la molécule d’adhésion des cellules épithéliales (EpCAM ou CD326), un marqueur épithélial « universel » des cancers[13]. L'expression de cette molécule varie selon les différents types de cancer[14], et les technologies de détection des cellules tumorales circulantes basées sur la molécule d’adhésion des cellules épithéliales sont largement appliquées aux cancers qui expriment fortement cette molécule, tels que le cancer du sein et de la prostate. De nombreuses études ont montré que les cellules tumorales circulantes dans les cancers du sein et de la prostate sont EpCAM-positifs et ont validé leur valeur pronostique dans les cas de stade précoce ou métastatique[15],[16]. D’autres types de cancers d’origine épithéliale, tels que les cancers pancréatiques[17], colorectaux[18] et hépatocellulaires[19], présentent également un taux de détection considérable de cellules tumorales circulantes positifs pour EpCAM. La présence de ces cellules tumorales circulantes EpCAM-positifs prédit des métastases précoces à distance et une survie plus faible des patients[18],[19],[20]. Cependant, l’utilisation d’EpCAM comme marqueur des cellules tumorales circulantes présente des limites. Il ne peut pas être utilisé dans les tumeurs EpCAM négatives ou à faible expression, telles que les cancers neurogènes. Les cellules tumorales circulantes peuvent subir une transition epithélio-mésenchymateuse et les marqueurs épithéliaux, y compris EpCAM, sont régulés négativement pendant cette transition, ce qui affecte le taux de détection des cellules tumorales circulantes positives pour EpCAM. Bien qu'il existe des doutes quant à la pertinence des technologies basées sur EpCAM pour détecter toutes les cellules tumorales circulantes, de nombreuses études ont illustré la valeur potentielle des cellules tumorales circulantes positives à EpCAM dans les applications cliniques[21]. Dans une certaine mesure, les cellules tumorales circulantes EpCAM-positifs constituent un sous-groupe important de tous les cellules tumorales circulantes , donc les cellules tumorales circulantes EpCAM-positifs pourraient toujours être un biomarqueur fiable si le pronostic du cancer et l'efficacité thérapeutique sont pertinents pour les CTC EpCAM-positifs.

Autres protéines

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Lors de la transition epithélio-mésenchymateuse des cellules cancéreuses présente des altérations moléculaires, notamment une diminution de l'expression des marqueurs épithéliaux (E-cadhérine, ZO-1, claudines et occludines) et une expression accrue des marqueurs mésenchymateux (vimentine, N-cadhérine, protéine spécifique des fibroblastes et fibronectine)[22]. La transition epithélio-mésenchymateuse est exécuté par des facteurs de transcription appartenant principalement aux familles SNAIL, TWIST et ZEB34. Toutes ces molécules liées à la transition epithélio-mésenchymateuse peuvent théoriquement être utilisées pour les méthodes de ciblage des EMT-CTC. Cependant, de nombreuses molécules liées à la transition epithélio-mésenchymateuse sont des protéines cytoplasmiques ou nucléaires, ce qui exclut leur utilisation dans les technologies de détection des cellules tumorales circulantes basées sur les molécules membranaires actuellement disponibles. Des protéines telles que la E-cadhérine, la vimentine étaient utilisées dans le passé en raison de leur accessibilité à la détection dans les technologies de détection des traditionnelles, notamment le tri par cytométrie en flux, l'immunocoloration et l'Hybridation in situ en fluorescence[23].

Analyse génomique

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L'instabilité génomique contribue à l'évolution des tumeurs et à l'émergence de sous-clones tumoraux résistants. La surveillance de l’instabilité génomique tumorale, notamment en termes de résistance tumorale et de métastases, contribue grandement à l’évaluation de la réponse au traitement et à la médecine de précision. L'évaluation des cellules tumorales circulantes par biopsie liquide non invasive est accessible pour un échantillonnage en série afin de détecter l'instabilité génomique de la tumeur.

La détermination du statut des mutations des gènes EGFR et KRAS est cruciale pour guider le traitement des patients atteints de cancer bronchique non à petites cellules recevant des inhibiteurs de la tyrosine kinase de l'EGFR et des patients atteints d'un cancer colorectal traités respectivement par un traitement anti-EGFR. La concordance des mutations entre les cellules tumorales circulantes et les tissus tumoraux primaires ou métastatiques a attiré beaucoup d'attention. En utilisant une technique microfluidique pour capturer les cellules tumorales circulantes, une étude a découvert que seuls deux des 31 patients présentant des mutations avaient échappé lors de leur test de détection[24]. Ils ont identifié la mutation activatrice de l'EGFR dans les cellules tumorales circulantes chez 92 % des patients métastatiques atteints de cancer bronchique non à petites cellules et ont détecté la mutation résistante aux médicaments T790M dans les cancer bronchiques non à petites cellules de 33 % des patients ayant répondu au traitement par inhibiteur de la tyrosine kinase et chez 64 % résistants aux traitements[24]. Pour l'analyse de la mutation du gène KRAS, le taux de concordance mutationnelle entre les cancers bronchiques non à petites cellules et les tumeurs primaires appariées variait de 37 % à 90 % dans les cas de cancer colorectal[25],[26],[27],[28].

Analyse transcriptionnelle

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Technologie d'isolation des cellules tumorales circulantes

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Technologies d'isolation des cellules tumorales circulantes

La mesure des caractéristiques mécaniques des CTC de tous les cancers est corrélée au pronostic de la maladie cancéreuse, selon les lois de l'oncologie physique[29].

Peut-être plus que d’autres tests diagnostiques traditionnels du cancer, l’isolement des cellules tumorales circulantes repose sur des processus techniques complexes et sur diverses méthodes permettant de les distinguer des cellules sanguines environnantes. Au cœur de cette complexité se trouve le niveau exceptionnel de purification nécessaire pour isoler les cellules tumorales circulante des globules blancs phénotypiquement similaires[30]. Le degré d’enrichissement cellulaire requis dépend des analyses prévues. La digital droplet PCR , ou PCR digitale en gouttelettes ou l’imagerie basée sur l’immunomarquage est compatible avec des niveaux modérés d’enrichissement de l’ordre de 10³ à 10⁴, tandis que les analyses unicellulaires nécessitent souvent un enrichissement supérieur à 10⁸[31],[32]. Ainsi, la stratégie d’enrichissement idéale des cellules tumorales circulantes doit être alignée sur l’application analytique prévue.

Il existe donc deux principales classes de stratégies d’enrichissement : des méthodes permettant jusqu’à un enrichissement de l’ordre de 10⁴ des cellules tumorales circulantes et des approches d’isolement unicellulaire qui augmentent encore la pureté cumulative jusqu’à 10⁸ pour des applications en aval plus exigeantes.

Visualisation directe des cellules tumorales circulantes

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C'est la technologie d’analyse des cellules tumorales circulantes probablement la méthode la moins biaisée. Elle implique d’abord la lyse des hématies, suivie du dépôt de toutes les cellules sanguines restantes sur plusieurs grandes lames qui sont ensuite colorées pour détecter la présence de marqueurs épithéliaux[33],[34]. Des logiciels analytiques basés sur l’intelligence artificielle sont ensuite utilisés pour scanner plusieurs millions de cellules afin d’identifier celles présentant des caractéristiques de cellule tumorale circulante.

L’un des avantages de cette technologie est qu’elle contourne la nécessité d’un enrichissement cellulaire initial[35]. Toutefois, elle présente des limites en termes d’évolutivité et de difficulté à utiliser des outils moléculaires autres que l’imagerie pour analyser les cellules tumorales circulantes entourées d’un très grand nombre de cellules hématopoïétiques.

La coloration de fond constitue un défi majeur dans les analyses de cellules sanguines non purifiées, en particulier lorsque les cellules tumorales circulantes sont présentes à de faibles fréquences (moins de 5 cellules tumorales circulante pour 10 mL de sang). C’est pourquoi cette approche nécessite un enrichissement préalable des cellules tumorales circulantes potentielles avant l’analyse par imagerie.

Sélection basée sur la taille ou les propriétés physiques

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Les cellules tumorales circulantes sont généralement plus grandes que la plupart des cellules hématopoïétiques, ce qui peut être exploité grâce à des technologies d’enrichissement par microfiltration[36] et par séparation microfluidique basée sur la taille[37],[38]. D’autres approches se sont concentrées sur une capacitance membranaire plus élevée et une conductivité cytoplasmique plus faible comparées à celles des leucocytes[39], ainsi que sur les propriétés diélectriques[40], la déformabilité[41], ou la densité[42].

La taille des cellules tumorales circulantes chevauche largement celle des autres leucocytes[43]. Ainsi, une sélection basée uniquement sur la taille peut entraîner une perte substantielle de cellule tumorale circulante et conduire à de faibles taux d’enrichissement dans les cancers où la taille des cellules tumorales circulantes n’est pas suffisamment distincte de celle des leucocytes.

Sélection immunologique

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Modèle optimal pour une sélection positive par le récepteur de l’acide folique des cellules tumorales circulantes

L’immunosélection est l’une des méthodes les plus largement utilisées pour isoler les cellules tumorales circulantes. Elle repose sur deux approches courantes : la sélection positive utilisant des marqueurs membranaires présents sur les cellules tumorales circulantes, ou la sélection négative visant à éliminer les leucocytes.

Sélection positive

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Pour la sélection positive, la glycoprotéine transmembranaire épithéliale (Epithelial cell adhesion molecule EpCAM), largement exprimée, a été largement utilisée[44]. Cependant, l’efficacité de la sélection positive est actuellement limitée par des pertes relativement importantes de cellules cibles lors des étapes de lavage et de centrifugation nécessaires à la purification par lot pour obtenir un enrichissement magnétique[45],[46].

Toutefois, la capture basée sur la glycoprotéine transmembranaire épithéliale présente l’inconvénient de dépendre d’un marqueur épithélial absent dans certains cancers et susceptible d’être perdu lorsque les cellules subissent une transition épithélio-mésenchymateuse[47]. Des approches alternatives pour l’immunocapture positive ont utilisé des marqueurs membranaires spécifiques d’une lignée cellulaire ou des épitopes cancéreux communs, notamment le récepteur de l’acide folique[48], l'antigène membranaire spécifique de la prostate (pas de rapport avec le PSA)[49], les protéines de la famille du récepteur du facteur de croissance épidermique[50], ou d’autres marqueurs membranaires spécifiques d’une tumeur ou d’une lignée.

Néanmoins, ces stratégies conservent le biais inhérent lié au fait de devoir pré-identifier un marqueur tumoral d’intérêt.

Fonctions des cellules tumorales circulantes

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Applications cliniques

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Applications possibles des cellules tumorales circulantes dans la prise en charge du cancer

L'utilité d'un test diagnostique est étroitement liée à son impact sur les interventions thérapeutiques. Ainsi, le développement des analyses basées sur les cellules tumorales circulantes et des nouvelles thérapies anticancéreuses détermine leur utilité en pratique clinique. Alors que le séquençage basé sur l’ADN tumoral circulant joue désormais un rôle essentiel dans les thérapies ciblées fondées sur les mutations, l'analyse des cellules tumorales circulantes pourraient jouer le même rôle dans le domaine en rapide évolution des thérapies immunologiques basées sur les anticorps et les lymphocytes T[51],[52].

L’étude des modifications de l’expression génique via l’ARN et les protéines, des altérations de la chromatine ou des propriétés fonctionnelles des cellules tumorales pourrait jouer un rôle croissant dans le diagnostic du cancer, et l’utilisation des cellules tumorales circulantes pourrait même un jour permettre d’éviter la nécessité de biopsies tumorales invasives.

Prise en charge des cancers métastasés

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Un nombre élevé de cellule tumorale circulante est généralement associé à des issues cliniques défavorables, comme l’ont montré les premières études quantifiant ces cellules dans le sang de patients atteints de cancer métastatique[53],[54].

  • Le comptage de plus de 5 cellules tumorales circulantes pour 7,5 mL chez des patientes atteintes de cancer du sein métastatique traitées par thérapie systémique a démontré un pouvoir pronostique indépendant pour une survie sans progression et une survie globale plus faibles[55],[56],[57].
  • Les seuils de mauvaise survie sont plus de 3 cellules tumorales circulantes / 7,5 mL dans le cancer colo-rectal et le carcinome rénal[58],[59].
  • Les seuils de mauvaise survie sont plus de 50 cellules tumorales circulantes / 7,5 mL dans le cancer du poumon à petites cellules[60].

Le suivi des variations des cellules tumorales circulantes dans le temps améliore encore la valeur pronostique :

  • des cellules tumorales circulantes persistants ou en augmentation anticipent souvent une résistance au traitement,
  • des cellules tumorales circulantes en diminution suggèrent une réponse précoce au traitement[57],[61].
  • Les cellules tumorales circulantes peuvent même stratifier les phénotypes du cancer du sein en formes moins agressives ou plus agressives, offrant une classification plus fine que les indices clinicopathologiques traditionnels[62].

Mais plusieurs essais n'ont montré aucun bénéfice à changer de chimiothérapie simplement en réponse à des cellules tumorales circulantes élevés persistants, en l’absence de vulnérabilités moléculaires associées[63],[64]. Bien que la FDA a approuvé la numération des cellules tumorales circulantes comme marqueur pronostique dans la prise en charge des cancers métastatiques, celle-ci n'est pas adopté dans les protocoles cancérologiques. Par contre les analyses moléculaires pratiquées sur les cellules tumorales circulantes ont montré leur intérêt en révélant des mutations responsables de résistance aux traitements ciblés[65],[66],[67].

Par rapport à d’autres biopsies liquides, l'étude des cellules tumorales circulantes sont particulièrement adaptées pour les thérapies immunologiques ciblant des protéines membranaires.Une biopsie tissulaire invasive prélève une seule métastase (souvent accessible), qui peut ne pas représenter l’ensemble du fardeau tumoral. Les cellules tumorales circulantes, reflétant l’ensemble des dépôts tumoraux, offrent une vision globale et non invasive de l’hétérogénéité de la cible.

Détection précoce des métastases et rôle dans l'évaluation de la maladie résiduelle

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Bien que rares, les cellules tumorales circulantes pourraient fournir des informations cruciales sur le développement précoce des métastases, compte tenu des limites actuelles d’imagerie pour détecter de très petites lésions métastatiques[68]. Cela est particulièrement pertinent pour les maladies précoces à haut risque et l’évaluation de la maladie résiduelle après chirurgie à visée curative.

Des cellules tumorales circulantes ont en effet été détectées dans le sang de patients atteints de cancers localisés précoces, aussi bien avant l’opération qu’après l’exérèse de la tumeur primaire[69],[70],[71],[72]. Dans le cancer du sein de stade I–III, environ 20 % des patientes présentent des cellules tumorales circulantes détectables et leur présence est associée à un risque accru de récidive, une survie globale diminuée[73],[74],[75].

Ces observations soulèvent deux questions essentielles : Ces cellules tumorales circulantes représentent-elles des cellules tumorales viables capables de former des métastases ? Une intervention thérapeutique où des cellules tumorales circulantes sont détectées sans signe radiologique de maladie pourrait-elle changer l’histoire naturelle de la maladie et prévenir la récidive ou l’apparition de métastases ? Ces questions prennent de l’importance dans un contexte où de plus en plus de traitements systémiques sont administrés autour de la chirurgie (néoadjuvant/adjuvant), offrant une opportunité d’interventions curatives nécessitant une approche adaptée au risque, afin de maximiser le bénéfice tout en limitant la toxicité.

Dans l’essai SUCCESS de phase III, la présence de cellules tumorales circulantes avant l’initiation de la chimiothérapie adjuvante, et après celle-ci, était associée à une survie sans maladie et une survie globale significativement diminuées. Environ 18 % des patientes présentaient encore des ellules tumorales circulantes deux ans après traitement, soulevant des questions sur : la nécessité d’une surveillance plus intensive, ou l’opportunité d’un traitement additionnel avant l’apparition visible de la maladie métastatique[75].

Un nombre croissant d’essais cliniques utilise l'ADN circulant tumoral pour mesurer la maladie résiduelle minimale après chirurgie pout initier un traitement de façon précoce, lorsque la charge tumorale est faible et la guérison encore possible. Mais l'ADN circulant tumoral ne permet pas d'orienter vers le meilleur traitement. La combinaison de la mesure de la maladie résiduelle par l'ADN circulant tumoral associée à l'analyse génétiques des cellules tumorales circulantenécessite de futures recherches[76].

L’étude allemande SURVIVE, démarrée en 2024, sera le premier grand essai randomisé évaluant si la biopsie liquide — incluant les cellules tumorales circulantes — apporte un bénéfice de survie en guidant la surveillance du cancer du sein précoce et en déclenchant des évaluations de restadification[77]. Cet essai devrait fournir des données déterminantes pour savoir si des interventions précoces en cas de maladie résiduelle minimale, ou en cas de cancer oligométastatique, peuvent réellement améliorer la survie à long terme.

Diagnostic précoce des cancers

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La complexité de l’isolement des cellules tumorales circulantes et de leur analyse génétique, empêche pour l’instant leur utilisation comme test de screening primaire dans la population générale. Des tentatives préliminaires ont toutefois été réalisées :

  • dépistage de cellules tumorales circulantes chez des personnes à haut risque de cancer du poumon[78],
  • dépistage dans le cancer du sein[79],[80],
  • dépistage dans le cancer de la prostate[81].

Rôle dans le traitement du cancer

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  • Lin, D., Shen, L., Luo, M. et al. Circulating tumor cells: biology and clinical significance. Sig Transduct Target Ther 6, 404 (2021). https://doi.org/10.1038/s41392-021-00817-8 paru sous licence Creative Commons Attribution 4.0 International
  • Dai, Charles S. Mishra, Avanish Edd, Jon Toner, Mehmet Maheswaran, Shyamala Haber, Daniel A. 2025/08/11 Cancer Cell Blood-based detection, molecular biology, and clinical applications https://doi.org/10.1016/j.ccell.2025.07.008 paru sous Creative Commons CC-BY license.

Notes et références

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  1. (en) GP Gupta et J. Massagué, « Cancer metastasis: building a framework », Cell, vol. 127, no 4, , p. 679–95 (PMID 17110329, DOI 10.1016/j.cell.2006.11.001).
  2. Ashworth, T. R. A case of cancer in which cells similar to those in the tumors were seen in the blood after death. Australas. Med. J. 14, 146–149 (1869).
  3. (en) K. Pantel et M. R. Speicher, « The biology of circulating tumor cells », Oncogene, vol. 35, no 10, , p. 1216–1224 (ISSN 1476-5594, DOI 10.1038/onc.2015.192, lire en ligne, consulté le )
  4. (en) Catherine Alix-Panabières et Klaus Pantel, « Challenges in circulating tumour cell research », Nature Reviews Cancer, vol. 14, no 9, , p. 623–631 (ISSN 1474-1768, DOI 10.1038/nrc3820, lire en ligne, consulté le )
  5. Artur Kowalik, Magdalena Kowalewska et Stanisław Góźdź, « Current approaches for avoiding the limitations of circulating tumor cells detection methods—implications for diagnosis and treatment of patients with solid tumors », Translational Research, vol. 185, , p. 58–84.e15 (ISSN 1931-5244, DOI 10.1016/j.trsl.2017.04.002, lire en ligne, consulté le )
  6. 1 2 J. Zhang, K. Chen et Z.H. Fan, « Circulating Tumor Cell Isolation and Analysis », dans Advances in Clinical Chemistry, Elsevier, , 1–31 p. (PMID 27346614, PMCID PMC5123699, DOI 10.1016/bs.acc.2016.03.003, lire en ligne)
  7. (en) Rick Kamps, Rita D. Brandão, Bianca J. van den Bosch et Aimee D. C. Paulussen, « Next-Generation Sequencing in Oncology: Genetic Diagnosis, Risk Prediction and Cancer Classification », International Journal of Molecular Sciences, vol. 18, no 2, , p. 308 (ISSN 1422-0067, PMID 28146134, PMCID PMC5343844, DOI 10.3390/ijms18020308, lire en ligne, consulté le )
  8. Lori M. Millner, Mark W. Linder, and Roland Valdes, Jr. Circulating Tumor Cells: A Review of Present Methods and the Need to Identify Heterogeneous Phenotypes Ann. Clin. Lab. Sci. 2013, 43, 295–304.
  9. Bert Gold, Milena Cankovic, Larissa V. Furtado et Frederick Meier, « Do Circulating Tumor Cells, Exosomes, and Circulating Tumor Nucleic Acids Have Clinical Utility? », The Journal of Molecular Diagnostics, vol. 17, no 3, , p. 209–224 (ISSN 1525-1578, PMID 25908243, PMCID PMC4411248, DOI 10.1016/j.jmoldx.2015.02.001, lire en ligne, consulté le )
  10. 1 2 (en) Eric Lin, Thong Cao, Sunitha Nagrath et Michael R. King, « Circulating Tumor Cells: Diagnostic and Therapeutic Applications », Annual Review of Biomedical Engineering, vol. 20, no 1, , p. 329–352 (ISSN 1523-9829 et 1545-4274, DOI 10.1146/annurev-bioeng-062117-120947, lire en ligne, consulté le )
  11. 1 2 Forte, V.A.; Barrak, D.K.; Elhodaky, M.; Tung, L.; Snow, A.; Lang, J.E. The potential for liquid biopsies in the precision medical treatment of breast cancer. Cancer Biol. Med. 2016, 13, 19–40.
  12. 1 2 (en) Ruchi Agashe et Razelle Kurzrock, « Circulating Tumor Cells: From the Laboratory to the Cancer Clinic », Cancers, vol. 12, no 9, , p. 2361 (ISSN 2072-6694, PMID 32825548, PMCID PMC7564158, DOI 10.3390/cancers12092361, lire en ligne, consulté le )
  13. (en) Olivier Gires, Min Pan, Henrik Schinke et Martin Canis, « Expression and function of epithelial cell adhesion molecule EpCAM: where are we after 40 years? », Cancer and Metastasis Reviews, vol. 39, no 3, , p. 969–987 (ISSN 1573-7233, PMID 32507912, PMCID PMC7497325, DOI 10.1007/s10555-020-09898-3, lire en ligne, consulté le )
  14. (en) Doris Popovic, Domagoj Vucic et Ivan Dikic, « Ubiquitination in disease pathogenesis and treatment », Nature Medicine, vol. 20, no 11, , p. 1242–1253 (ISSN 1546-170X, DOI 10.1038/nm.3739, lire en ligne, consulté le )
  15. (en) Carmen Criscitiello, Christos Sotiriou et Michail Ignatiadis, « Circulating tumor cells and emerging blood biomarkers in breast cancer », Current Opinion in Oncology, vol. 22, no 6, , p. 552–558 (ISSN 1040-8746, DOI 10.1097/CCO.0b013e32833de186, lire en ligne, consulté le )
  16. (en) Michael A. Gorin, James E. Verdone, Emma van der Toom et Trinity J. Bivalacqua, « Circulating tumour cells as biomarkers of prostate, bladder, and kidney cancer », Nature Reviews Urology, vol. 14, no 2, , p. 90–97 (ISSN 1759-4820, DOI 10.1038/nrurol.2016.224, lire en ligne, consulté le )
  17. (en) Jose I. Varillas, Jinling Zhang, Kangfu Chen et Isis I. Barnes, « Microfluidic Isolation of Circulating Tumor Cells and Cancer Stem-Like Cells from Patients with Pancreatic Ductal Adenocarcinoma », Theranostics, vol. 9, no 5, , p. 1417–1425 (ISSN 1838-7640, PMID 30867841, PMCID PMC6401494, DOI 10.7150/thno.28745, lire en ligne, consulté le )
  18. 1 2 María Marcuello, Veronika Vymetalkova, Rui P. L. Neves et Saray Duran-Sanchon, « Circulating biomarkers for early detection and clinical management of colorectal cancer », Molecular Aspects of Medicine, new insights on the molecular aspects of colorectal cancer, vol. 69, , p. 107–122 (ISSN 0098-2997, DOI 10.1016/j.mam.2019.06.002, lire en ligne, consulté le )
  19. 1 2 (en) Wenxi Xia, Haidong Li, Yueqing Li et Miao Li, « In Vivo Coinstantaneous Identification of Hepatocellular Carcinoma Circulating Tumor Cells by Dual-Targeting Magnetic-Fluorescent Nanobeads », Nano Letters, vol. 21, no 1, , p. 634–641 (ISSN 1530-6984 et 1530-6992, DOI 10.1021/acs.nanolett.0c04180, lire en ligne, consulté le )
  20. Qianwei Ye, Sunbin Ling, Shusen Zheng et Xiao Xu, « Liquid biopsy in hepatocellular carcinoma: circulating tumor cells and circulating tumor DNA », Molecular Cancer, vol. 18, no 1, , p. 114 (ISSN 1476-4598, PMID 31269959, PMCID PMC6607541, DOI 10.1186/s12943-019-1043-x, lire en ligne, consulté le )
  21. (en) Zahra Eslami-S, Luis Enrique Cortés-Hernández et Catherine Alix-Panabières, « Epithelial Cell Adhesion Molecule: An Anchor to Isolate Clinically Relevant Circulating Tumor Cells », Cells, vol. 9, no 8, , p. 1836 (ISSN 2073-4409, PMID 32764280, PMCID PMC7464831, DOI 10.3390/cells9081836, lire en ligne, consulté le )
  22. Mittal, V. Epithelial mesenchymal transition in tumor metastasis. Annu. Rev. Pathol. 13, 395–412 (2018).
  23. (en) Takahiro Okabe, Shinsaku Togo, Yuichi Fujimoto et Junko Watanabe, « Mesenchymal Characteristics and Predictive Biomarkers on Circulating Tumor Cells for Therapeutic Strategy », Cancers, vol. 12, no 12, , p. 3588 (ISSN 2072-6694, PMID 33266262, PMCID PMC7761066, DOI 10.3390/cancers12123588, lire en ligne, consulté le )
  24. 1 2 (en) Shyamala Maheswaran, Lecia V. Sequist, Sunitha Nagrath et Lindsey Ulkus, « Detection of Mutations in EGFR in Circulating Lung-Cancer Cells », New England Journal of Medicine, vol. 359, no 4, , p. 366–377 (ISSN 0028-4793 et 1533-4406, DOI 10.1056/NEJMoa0800668, lire en ligne, consulté le )
  25. Francesco Fabbri, Silvia Carloni, Wainer Zoli et Paola Ulivi, « Detection and recovery of circulating colon cancer cells using a dielectrophoresis-based device: KRAS mutation status in pure CTCs », Cancer Letters, vol. 335, no 1, , p. 225–231 (ISSN 0304-3835, DOI 10.1016/j.canlet.2013.02.015, lire en ligne, consulté le )
  26. (en) Marcilei EC Buim, Marcello F Fanelli, Virgilio S Souza et Juliana Romero, « Detection of KRAS mutations in circulating tumor cells from patients with metastatic colorectal cancer », Cancer Biology & Therapy, vol. 16, no 9, , p. 1289–1295 (ISSN 1538-4047 et 1555-8576, PMID 26252055, PMCID PMC4622515, DOI 10.1080/15384047.2015.1070991, lire en ligne, consulté le )
  27. (en) Aristea Kalikaki, Helen Politaki, John Souglakos et Stella Apostolaki, « KRAS Genotypic Changes of Circulating Tumor Cells during Treatment of Patients with Metastatic Colorectal Cancer », PLOS ONE, vol. 9, no 8, , e104902 (ISSN 1932-6203, PMID 25137394, PMCID PMC4138105, DOI 10.1371/journal.pone.0104902, lire en ligne, consulté le )
  28. Yuurin Kondo, Kazuhiko Hayashi, Kazuyuki Kawakami et Yukari Miwa, « KRAS mutation analysis of single circulating tumor cells from patients with metastatic colorectal cancer », BMC Cancer, vol. 17, no 1, , p. 311 (ISSN 1471-2407, PMID 28468669, PMCID PMC5415811, DOI 10.1186/s12885-017-3305-6, lire en ligne, consulté le )
  29. (en) Sanjay Kumar et Valerie M. Weaver, « Mechanics, malignancy, and metastasis: The force journey of a tumor cell », Cancer and Metastasis Reviews, vol. 28, nos 1-2, , p. 113–127 (ISSN 0167-7659 et 1573-7233, DOI 10.1007/s10555-008-9173-4, lire en ligne, consulté le )
  30. (en) Avanish Mishra, Shih-Bo Huang, Taronish Dubash et Risa Burr, « Tumor cell-based liquid biopsy using high-throughput microfluidic enrichment of entire leukapheresis product », Nature Communications, vol. 16, no 1, , p. 32 (ISSN 2041-1723, PMID 39746954, PMCID 11696112, DOI 10.1038/s41467-024-55140-x, lire en ligne, consulté le )
  31. Mark Kalinich, Irun Bhan, Tanya T. Kwan et David T. Miyamoto, « An RNA-based signature enables high specificity detection of circulating tumor cells in hepatocellular carcinoma », Proceedings of the National Academy of Sciences, vol. 114, no 5, , p. 1123–1128 (PMID 28096363, PMCID 5293050, DOI 10.1073/pnas.1617032114, lire en ligne, consulté le )
  32. (en) Tanya T. Kwan, Aditya Bardia, Laura M. Spring et Anita Giobbie-Hurder, « A Digital RNA Signature of Circulating Tumor Cells Predicting Early Therapeutic Response in Localized and Metastatic Breast Cancer », Cancer Discovery, vol. 8, no 10, , p. 1286–1299 (ISSN 2159-8274 et 2159-8290, DOI 10.1158/2159-8290.CD-18-0432, lire en ligne, consulté le )
  33. (it) Shannon L. Werner, Ryon P. Graf, Mark Landers et David T. Valenta, « Analytical Validation and Capabilities of the Epic CTC Platform: Enrichment-Free Circulating Tumour Cell Detection and Characterization », Journal of Circulating Biomarkers, vol. 4, no 1, (ISSN 1849-4544, DOI 10.33393/jcb.2015.2053, lire en ligne, consulté le )
  34. Dena Marrinucci, Kelly Bethel, Anand Kolatkar et Madelyn S Luttgen, « Fluid biopsy in patients with metastatic prostate, pancreatic and breast cancers », Physical Biology, vol. 9, no 1, , p. 016003 (ISSN 1478-3967 et 1478-3975, PMID 22306768, PMCID 3387996, DOI 10.1088/1478-3975/9/1/016003, lire en ligne, consulté le )
  35. Daniel E. Campton, Arturo B. Ramirez, Joshua J. Nordberg et Nick Drovetto, « High-recovery visual identification and single-cell retrieval of circulating tumor cells for genomic analysis using a dual-technology platform integrated with automated immunofluorescence staining », BMC Cancer, vol. 15, no 1, , p. 360 (ISSN 1471-2407, PMID 25944336, PMCID 4430903, DOI 10.1186/s12885-015-1383-x, lire en ligne, consulté le )
  36. (en) Charles S. Dai, Avanish Mishra, Jon Edd et Mehmet Toner, « Circulating tumor cells: Blood-based detection, molecular biology, and clinical applications », Cancer Cell, vol. 43, no 8, , p. 1399–1422 (PMID 40749671, PMCID 12440132, DOI 10.1016/j.ccell.2025.07.008, lire en ligne, consulté le )
  37. (en) Elodie Sollier, Derek E. Go, James Che et Daniel R. Gossett, « Size-selective collection of circulating tumor cells using Vortex technology », Lab Chip, vol. 14, no 1, , p. 63–77 (ISSN 1473-0197 et 1473-0189, DOI 10.1039/C3LC50689D, lire en ligne, consulté le )
  38. (en) Majid Ebrahimi Warkiani, Bee Luan Khoo, Lidan Wu et Andy Kah Ping Tay, « Ultra-fast, label-free isolation of circulating tumor cells from blood using spiral microfluidics », Nature Protocols, vol. 11, no 1, , p. 134–148 (ISSN 1750-2799, DOI 10.1038/nprot.2016.003, lire en ligne, consulté le )
  39. Sandhya Sharma, Rachel Zhuang, Marisa Long et Mirjana Pavlovic, « Circulating tumor cell isolation, culture, and downstream molecular analysis », Biotechnology Advances, vol. 36, no 4, , p. 1063–1078 (ISSN 0734-9750, PMID 29559380, PMCID 5971144, DOI 10.1016/j.biotechadv.2018.03.007, lire en ligne, consulté le )
  40. (en) Sangjo Shim, Katherine Stemke-Hale, Apostolia M. Tsimberidou et Jamileh Noshari, « Antibody-independent isolation of circulating tumor cells by continuous-flow dielectrophoresis », Biomicrofluidics, vol. 7, no 1, (ISSN 1932-1058, PMID 24403989, PMCID 3562332, DOI 10.1063/1.4774304, lire en ligne, consulté le )
  41. (en) Marta Urbanska, Hector E. Muñoz, Josephine Shaw Bagnall et Oliver Otto, « A comparison of microfluidic methods for high-throughput cell deformability measurements », Nature Methods, vol. 17, no 6, , p. 587–593 (ISSN 1548-7105, PMID 32341544, PMCID 7275893, DOI 10.1038/s41592-020-0818-8, lire en ligne, consulté le )
  42. Peng Li, Zhangming Mao, Zhangli Peng et Lanlan Zhou, « Acoustic separation of circulating tumor cells », Proceedings of the National Academy of Sciences, vol. 112, no 16, , p. 4970–4975 (PMID 25848039, PMCID 4413297, DOI 10.1073/pnas.1504484112, lire en ligne, consulté le )
  43. (en) Emre Ozkumur, Ajay M. Shah, Jordan C. Ciciliano et Benjamin L. Emmink, « Inertial Focusing for Tumor Antigen–Dependent and –Independent Sorting of Rare Circulating Tumor Cells », Science Translational Medicine, vol. 5, no 179, (ISSN 1946-6234 et 1946-6242, PMID 23552373, PMCID 3760275, DOI 10.1126/scitranslmed.3005616, lire en ligne, consulté le )
  44. Lihua Wang, Priya Balasubramanian, Alice P. Chen et Shivaani Kummar, « Promise and limits of the CellSearch platform for evaluating pharmacodynamics in circulating tumor cells », Seminars in Oncology, pharmacodynamics in Cancer Drug Development, vol. 43, no 4, , p. 464–475 (ISSN 0093-7754, PMID 27663478, PMCID 5074690, DOI 10.1053/j.seminoncol.2016.06.004, lire en ligne, consulté le )
  45. (en) Sunitha Nagrath, Lecia V. Sequist, Shyamala Maheswaran et Daphne W. Bell, « Isolation of rare circulating tumour cells in cancer patients by microchip technology », Nature, vol. 450, no 7173, , p. 1235–1239 (ISSN 1476-4687, PMID 18097410, PMCID 3090667, DOI 10.1038/nature06385, lire en ligne, consulté le )
  46. Shannon L. Stott, Chia-Hsien Hsu, Dina I. Tsukrov et Min Yu, « Isolation of circulating tumor cells using a microvortex-generating herringbone-chip », Proceedings of the National Academy of Sciences, vol. 107, no 43, , p. 18392–18397 (PMID 20930119, PMCID 2972993, DOI 10.1073/pnas.1012539107, lire en ligne, consulté le )
  47. Tobias M. Gorges, Ingeborg Tinhofer, Michael Drosch et Lars Röse, « Circulating tumour cells escape from EpCAM-based detection due to epithelial-to-mesenchymal transition », BMC Cancer, vol. 12, no 1, , p. 178 (ISSN 1471-2407, PMID 22591372, PMCID 3502112, DOI 10.1186/1471-2407-12-178, lire en ligne, consulté le )
  48. (en) Yingwen Hu, Danyang Chen, John V. Napoleon et Madduri Srinivasarao, « Efficient capture of circulating tumor cells with low molecular weight folate receptor-specific ligands », Scientific Reports, vol. 12, no 1, , p. 8555 (ISSN 2045-2322, PMID 35595733, PMCID 9122947, DOI 10.1038/s41598-022-12118-3, lire en ligne, consulté le )
  49. (en) Hadi Esmaeilsabzali, Robert T. M. Payer, Yubin Guo et Michael E. Cox, « Development of a microfluidic platform for size-based hydrodynamic enrichment and PSMA-targeted immunomagnetic isolation of circulating tumour cells in prostate cancer », Biomicrofluidics, vol. 13, no 1, (ISSN 1932-1058, PMID 30867880, PMCID 6404957, DOI 10.1063/1.5064473, lire en ligne, consulté le )
  50. Ning-Ning Lu, Min Xie, Jing Wang et Song-Wei Lv, « Biotin-Triggered Decomposable Immunomagnetic Beads for Capture and Release of Circulating Tumor Cells », ACS Applied Materials & Interfaces, vol. 7, no 16, , p. 8817–8826 (ISSN 1944-8244, DOI 10.1021/acsami.5b01397, lire en ligne, consulté le )
  51. (en) Tobias M. Gorges, Sabine Riethdorf, Oliver von Ahsen et Paulina Nastały, « Heterogeneous PSMA expression on circulating tumor cells - a potential basis for stratification and monitoring of PSMA-directed therapies in prostate cancer », Oncotarget, vol. 7, no 23, , p. 34930–34941 (ISSN 1949-2553, PMID 27145459, PMCID 5085200, DOI 10.18632/oncotarget.9004, lire en ligne, consulté le )
  52. (en) Tobias M. Gorges, Sabine Riethdorf, Oliver von Ahsen et Paulina Nastały, « Heterogeneous PSMA expression on circulating tumor cells - a potential basis for stratification and monitoring of PSMA-directed therapies in prostate cancer », Oncotarget, vol. 7, no 23, , p. 34930–34941 (ISSN 1949-2553, PMID 27145459, PMCID 5085200, DOI 10.18632/oncotarget.9004, lire en ligne, consulté le )
  53. Emilian Racila, David Euhus, Arthur J. Weiss et Chandra Rao, « Detection and characterization of carcinoma cells in the blood », Proceedings of the National Academy of Sciences, vol. 95, no 8, , p. 4589–4594 (PMID 9539782, PMCID 22534, DOI 10.1073/pnas.95.8.4589, lire en ligne, consulté le )
  54. Fehm T, Sagalowsky A, Clifford E, Beitsch P, Saboorian H, Euhus D, Meng S, Morrison L, Tucker T, Lane N, Ghadimi BM, Heselmeyer-Haddad K, Ried T, Rao C, Uhr J. Cytogenetic evidence that circulating epithelial cells in patients with carcinoma are malignant. Clin Cancer Res. 2002 Jul;8(7):2073-84. PMID 12114406.
  55. (en) Massimo Cristofanilli, G. Thomas Budd, Matthew J. Ellis et Alison Stopeck, « Circulating Tumor Cells, Disease Progression, and Survival in Metastatic Breast Cancer », New England Journal of Medicine, vol. 351, no 8, , p. 781–791 (ISSN 0028-4793 et 1533-4406, DOI 10.1056/NEJMoa040766, lire en ligne, consulté le )
  56. (en) Massimo Cristofanilli, Daniel F. Hayes, G. Thomas Budd et Mathew J. Ellis, « Circulating Tumor Cells: A Novel Prognostic Factor for Newly Diagnosed Metastatic Breast Cancer », Journal of Clinical Oncology, vol. 23, no 7, , p. 1420–1430 (ISSN 0732-183X et 1527-7755, DOI 10.1200/JCO.2005.08.140, lire en ligne, consulté le )
  57. 1 2 (en) François-Clément Bidard, Dieter J Peeters, Tanja Fehm et Franco Nolé, « Clinical validity of circulating tumour cells in patients with metastatic breast cancer: a pooled analysis of individual patient data », The Lancet Oncology, vol. 15, no 4, , p. 406–414 (DOI 10.1016/S1470-2045(14)70069-5, lire en ligne, consulté le )
  58. (en) Steven J. Cohen, Cornelis J.A. Punt, Nicholas Iannotti et Bruce H. Saidman, « Relationship of Circulating Tumor Cells to Tumor Response, Progression-Free Survival, and Overall Survival in Patients With Metastatic Colorectal Cancer », Journal of Clinical Oncology, vol. 26, no 19, , p. 3213–3221 (ISSN 0732-183X et 1527-7755, DOI 10.1200/JCO.2007.15.8923, lire en ligne, consulté le )
  59. (en) Umberto Basso, Antonella Facchinetti, Elisabetta Rossi et Marco Maruzzo, « Prognostic Role of Circulating Tumor Cells in Metastatic Renal Cell Carcinoma: A Large, Multicenter, Prospective Trial », The Oncologist, vol. 26, no 9, , p. 740–750 (ISSN 1083-7159 et 1549-490X, PMID 34077597, PMCID 8417856, DOI 10.1002/onco.13842, lire en ligne, consulté le )
  60. (en) Jian-Mei Hou, Matthew G. Krebs, Lee Lancashire et Robert Sloane, « Clinical Significance and Molecular Characteristics of Circulating Tumor Cells and Circulating Tumor Microemboli in Patients With Small-Cell Lung Cancer », Journal of Clinical Oncology, vol. 30, no 5, , p. 525–532 (ISSN 0732-183X et 1527-7755, DOI 10.1200/JCO.2010.33.3716, lire en ligne, consulté le )
  61. Anna-Maria Larsson, Sara Jansson, Pär-Ola Bendahl et Charlotte Levin Tykjaer Jörgensen, « Longitudinal enumeration and cluster evaluation of circulating tumor cells improve prognostication for patients with newly diagnosed metastatic breast cancer in a prospective observational trial », Breast Cancer Research, vol. 20, no 1, , p. 48 (ISSN 1465-542X, PMID 29884204, PMCID 5994056, DOI 10.1186/s13058-018-0976-0, lire en ligne, consulté le )
  62. Massimo Cristofanilli, Jean-Yves Pierga, James Reuben et Alfred Rademaker, « The clinical use of circulating tumor cells (CTCs) enumeration for staging of metastatic breast cancer (MBC): International expert consensus paper », Critical Reviews in Oncology/Hematology, vol. 134, , p. 39–45 (ISSN 1040-8428, DOI 10.1016/j.critrevonc.2018.12.004, lire en ligne, consulté le )
  63. (en) Jeffrey B. Smerage, William E. Barlow, Gabriel N. Hortobagyi et Eric P. Winer, « Circulating Tumor Cells and Response to Chemotherapy in Metastatic Breast Cancer: SWOG S0500 », Journal of Clinical Oncology, vol. 32, no 31, , p. 3483–3489 (ISSN 0732-183X et 1527-7755, DOI 10.1200/JCO.2014.56.2561, lire en ligne, consulté le )
  64. (en) Luc Cabel, Frédérique Berger, Paul Cottu et Delphine Loirat, « Clinical utility of circulating tumour cell-based monitoring of late-line chemotherapy for metastatic breast cancer: the randomised CirCe01 trial », British Journal of Cancer, vol. 124, no 7, , p. 1207–1213 (ISSN 1532-1827, PMID 33473163, PMCID 8007590, DOI 10.1038/s41416-020-01227-3, lire en ligne, consulté le )
  65. (en) Shyamala Maheswaran, Lecia V. Sequist, Sunitha Nagrath et Lindsey Ulkus, « Detection of Mutations in EGFR in Circulating Lung-Cancer Cells », New England Journal of Medicine, vol. 359, no 4, , p. 366–377 (ISSN 0028-4793 et 1533-4406, DOI 10.1056/NEJMoa0800668, lire en ligne, consulté le )
  66. (en) Tilak K. Sundaresan, Lecia V. Sequist, John V. Heymach et Gregory J. Riely, « Detection of T790M, the Acquired Resistance EGFR Mutation, by Tumor Biopsy versus Noninvasive Blood-Based Analyses », Clinical Cancer Research, vol. 22, no 5, , p. 1103–1110 (ISSN 1078-0432 et 1557-3265, DOI 10.1158/1078-0432.CCR-15-1031, lire en ligne, consulté le )
  67. (en) Emma Pailler, Vincent Faugeroux, Marianne Oulhen et Laura Mezquita, « Acquired Resistance Mutations to ALK Inhibitors Identified by Single Circulating Tumor Cell Sequencing in ALK -Rearranged Non–Small-Cell Lung Cancer », Clinical Cancer Research, vol. 25, no 22, , p. 6671–6682 (ISSN 1078-0432 et 1557-3265, DOI 10.1158/1078-0432.CCR-19-1176, lire en ligne, consulté le )
  68. (en) John V. Frangioni, « New Technologies for Human Cancer Imaging », Journal of Clinical Oncology, vol. 26, no 24, , p. 4012–4021 (ISSN 0732-183X et 1527-7755, DOI 10.1200/JCO.2007.14.3065, lire en ligne, consulté le )
  69. (en) Wen-Sy Tsai, Jinn-Shiun Chen, Hung-Jen Shao et Jen-Chia Wu, « Circulating Tumor Cell Count Correlates with Colorectal Neoplasm Progression and Is a Prognostic Marker for Distant Metastasis in Non-Metastatic Patients », Scientific Reports, vol. 6, no 1, , p. 24517 (ISSN 2045-2322, PMID 27075165, PMCID 4830949, DOI 10.1038/srep24517, lire en ligne, consulté le )
  70. (en) Malgorzata Banys, Natalia Krawczyk, Sven Becker et Jolanta Jakubowska, « The influence of removal of primary tumor on incidence and phenotype of circulating tumor cells in primary breast cancer », Breast Cancer Research and Treatment, vol. 132, no 1, , p. 121–129 (ISSN 1573-7217, DOI 10.1007/s10549-011-1569-0, lire en ligne, consulté le )
  71. (en) Gennaro Galizia, Marica Gemei, Michele Orditura et Ciro Romano, « Postoperative Detection of Circulating Tumor Cells Predicts Tumor Recurrence in Colorectal Cancer Patients », Journal of Gastrointestinal Surgery, vol. 17, no 10, , p. 1809–1818 (DOI 10.1007/s11605-013-2258-6, lire en ligne, consulté le )
  72. (en) U. Bork, N. N. Rahbari, S. Schölch et C. Reissfelder, « Circulating tumour cells and outcome in non-metastatic colorectal cancer: a prospective study », British Journal of Cancer, vol. 112, no 8, , p. 1306–1313 (ISSN 1532-1827, PMID 25867263, PMCID 4402459, DOI 10.1038/bjc.2015.88, lire en ligne, consulté le )
  73. (en) Tanya T. Kwan, Aditya Bardia, Laura M. Spring et Anita Giobbie-Hurder, « A Digital RNA Signature of Circulating Tumor Cells Predicting Early Therapeutic Response in Localized and Metastatic Breast Cancer », Cancer Discovery, vol. 8, no 10, , p. 1286–1299 (ISSN 2159-8274 et 2159-8290, DOI 10.1158/2159-8290.CD-18-0432, lire en ligne, consulté le )
  74. (en) Wolfgang J. Janni, Brigitte Rack, Leon W.M.M. Terstappen et Jean-Yves Pierga, « Pooled Analysis of the Prognostic Relevance of Circulating Tumor Cells in Primary Breast Cancer », Clinical Cancer Research, vol. 22, no 10, , p. 2583–2593 (ISSN 1078-0432 et 1557-3265, DOI 10.1158/1078-0432.CCR-15-1603, lire en ligne, consulté le )
  75. 1 2 (en) Elisabeth Trapp, Wolfgang Janni, Christian Schindlbeck et Julia Jückstock, « Presence of Circulating Tumor Cells in High-Risk Early Breast Cancer During Follow-Up and Prognosis », JNCI: Journal of the National Cancer Institute, vol. 111, no 4, , p. 380–387 (ISSN 0027-8874 et 1460-2105, DOI 10.1093/jnci/djy152, lire en ligne, consulté le )
  76. (en) Alfonso Alba-Bernal, Ana Godoy-Ortiz, María Emilia Domínguez-Recio et Esperanza López-López, « Increased blood draws for ultrasensitive ctDNA and CTCs detection in early breast cancer patients », npj Breast Cancer, vol. 10, no 1, , p. 36 (ISSN 2374-4677, PMID 38750090, PMCID 11096188, DOI 10.1038/s41523-024-00642-6, lire en ligne, consulté le )
  77. (en) Kerstin Pfister, Sophia Huesmann, Thomas W. P. Friedl et Angelina Fink, « The SURVIVE study: Liquid biopsy guided surveillance after intermediate- to high-risk early breast cancer. », Journal of Clinical Oncology, vol. 42, no 16_suppl, , TPS620–TPS620 (ISSN 0732-183X et 1527-7755, DOI 10.1200/JCO.2024.42.16_suppl.TPS620, lire en ligne, consulté le )
  78. (en) Ilie M, Hofman V, Long-Mira E, Selva E, Vignaud J-M, et al., « “Sentinel” Circulating Tumor Cells Allow Early Diagnosis of Lung Cancer in Patients with Chronic Obstructive Pulmonary Disease », PLoS ONE, vol. 9, no 10-., (DOI 10.1371/journal.pone.0111597, lire en ligne).
  79. (en) Timothy Crook, Robert Leonard, Kefah Mokbel et Alastair Thompson, « Accurate Screening for Early-Stage Breast Cancer by Detection and Profiling of Circulating Tumor Cells », Cancers, vol. 14, no 14, , p. 3341 (ISSN 2072-6694, PMID 35884402, PMCID 9316476, DOI 10.3390/cancers14143341, lire en ligne, consulté le )
  80. (en) Amira Mehtar, Janine Wechsler, Christophe Desterke, Julien Giron-Michel, Amira Bouzidi, Aude Burlion, Fawzia Louache, Samira Kahia-Tani, Georges Uzan et Sina Naserian, « Optimizing Detection of Circulating Tumor Cells in Breast Cancer: Unveiling New Markers for Clinical Applications », International Journal of Molecular Sciences, vol. 26, , p. 19 (DOI 10.3390/ijms26104714, lire en ligne Accès libre [PDF], consulté le )
  81. (en) Sewanti Limaye, Simon Chowdhury, Nitesh Rohatgi et Anantbhushan Ranade, « Accurate prostate cancer detection based on enrichment and characterization of prostate cancer specific circulating tumor cells », Cancer Medicine, vol. 12, no 8, , p. 9116–9127 (ISSN 2045-7634, PMID 36718027, PMCID 10166919, DOI 10.1002/cam4.5649, lire en ligne, consulté le )

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